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免疫組化 IHC-P 實驗方案分享

2024-7-4  閱讀(449)

  免疫組化 IHC-P 實驗方案分享(僅供參考)
 
  1.脫蠟和水化,時間由二甲ben新鮮程度和室溫等綜合決定
 
  2.抗原修復(fù),修復(fù)強度:高壓修復(fù)>微波修復(fù)>胰-酶修復(fù);修復(fù)液多種,EDTA>檸檬酸;85~95℃處理約15min,自然冷卻至室溫
 
  3.細胞通透,TritonX-100, >10 um厚切片
 
  4.滅活內(nèi)源性過氧化物酶和生-物-素,3% H2O2 10~12min
 
  5.血清封閉,小牛血清、BSA、羊血清, 不能與一抗來源一致
 
  6.抗體孵育,濃度最重要,溫度決定反應(yīng)速度,時間決定反應(yīng)量
 
  7.--- 4℃過夜(16~24h),次日37 ℃復(fù)溫 30 min,反應(yīng)溫和,背景淺
 
  8.--- 37 ℃ (1-2 h),反應(yīng)速度快,時間短
 
  9.--- 室溫,無法保證每次環(huán)境溫度控制在一定范圍,不建議
 
  10.抗體稀釋液(PBS, 專用的, PH7.4)
 
  11.切片清洗(浸洗、沖洗和漂洗,普通5 min*3 ,抗體10min*4)
 
  12.DAB顯色,由顯微鏡下控制顯色時間,決定背景的深淺和特異性染色的深淺
 
  13.復(fù)染,目的是形成細胞輪廓,從而更好地對目標蛋白進行定位,胞漿蛋白適當(dāng)時間長一點,核蛋白則要短。
 
  14.長期保存,高倍鏡觀察,需脫水透化
 
  15.封片,中性樹膠等封片,避免產(chǎn)生氣泡
 
  16.免疫熒光注意避光,防止熒光衰減淬滅,防止自發(fā)熒光現(xiàn)象
 


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