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PCR試劑盒實驗反應的主要成份分述

2024-5-27  閱讀(89)

  PCR( Polymerase Chain Reaction)-聚合酶鏈式反應,可以選擇性擴增一段DNA序列。其基本步驟是,首先將待擴增的模板DNA變性使之成為單鏈,DNA樣品中,特異性的引物能夠與其互補的序列雜交,在dNTPs和Taq酶存在時,就可以合成模板DNA的互補鏈,反應完成后,將反應混合物加熱使DNA雙鏈變性,溫度下降后,過量的引物又可以開始第二輪的合成反應。PCR反應中的主要由引物、 4種三磷酸脫氧核苷酸(dNTP)、Mg2+、反應緩沖液、模板和Taq DNA聚合酶六個成份組成。各個組份都能影響 PCR 結(jié)果的好壞。
 
  1. 引物
 
  PCR反應產(chǎn)物的特異性由一對上下游引物所決定。引物的好壞往往是PCR成敗的關(guān)鍵。引物設計和選擇目的DNA序列區(qū)域時可遵循下列原則:
 
  (1) 引物長度約為16-30 bp, 太短會降低退火溫度影響引物與模板配對,從而使非特異性增高。太長則比較浪費,且難以合成。
 
  (2)引物中G+C含量通常為40%-60%,可按下式粗略估計引物的解鏈溫度 Tm=4(G+C)+2(A+T)。
 
  (3)四種堿基應隨機分布,在3'端不存在連續(xù)3個G或C,因這樣易導致錯誤引發(fā)。
 
  (4)引物3'端最好與目的序列閱讀框架中密碼子第一或第二位核苷酸對應, 以減少由于密碼子擺動產(chǎn)生的不配對。
 
  (5)在引物內(nèi), 尤其在3'端應不存在二級結(jié)構(gòu)。
 
  (6)兩引物之間尤其在3'端不能互補, 以防出現(xiàn)引物二聚體, 減少產(chǎn)量。兩引物間最好不存在4個連續(xù)堿基的同源性或互補性。
 
  (7)引物5'端對擴增特異性影響不大, 可在引物設計時加上限制酶位點、核糖 體結(jié)合位點、起始密碼子、缺失或插入突變位點以及標記熒光素等。通常應在5'端限制酶位點外再加1-2個保護堿基。
 
  (8)引物不與模板結(jié)合位點以外的序列互補。所擴增產(chǎn)物本身無穩(wěn)定的二級結(jié)構(gòu), 以免產(chǎn)生非特異性擴增,影響產(chǎn)量。
 
  (9)簡并引物應選用簡并程度低的密碼子, 例如選用只有一種密碼子的Met, 3'端應不存在簡并性。否則可能由于產(chǎn)量低而看不見擴增產(chǎn)物。
 
  (10)一般PCR反應中的引物終濃度為0.2-1.0 μmol/L。引物過多會產(chǎn)生錯誤引導或產(chǎn)生引物二聚體, 過低則降低產(chǎn)量。利用紫外分光光度計, 可精確計算引物濃度, 在1cm光程比色杯中,260nm下,引物濃度可按下式計算:
 
  X mol/L= OD260/ A(16000)+C(70000)+G(12000)+T(9600)
 
  X: 引物摩爾濃度,A、C、G、T:引物中4種不同堿基個數(shù)。
 
  2. 4種三磷酸脫氧核苷酸(dNTP)
 
  (1)dNTP應用NaOH 將pH調(diào)至7.0,并用分光光度計測定其準確濃度。
 
  (2)dNTP原液可配成5-10 mmol/L并分裝,-20℃貯存。一般反應中每種dNTP的終濃度為20-200 μmol/L。
 
  (3)理論上4 種 dNTP各20 μmol/L,足以在100 μl反應中合成2.6 μg的DNA。當dNTP終濃度大于50 mmol/L時可抑制Taq DNA聚合酶的活性。4種dNTP的濃度應該相等,以減少合成中由于某種dNTP的不足出現(xiàn)的錯誤摻入。
 
  3. Mg2+
 
  (1)Mg2+濃度對Taq DNA聚合酶影響很大,它可影響酶的活性和真實性,影響引物退火和解鏈溫度, 影響產(chǎn)物的特異性以及引物二聚體的形成等。
 
  (2)通常Mg2+ 濃度范圍為0.5-2 mmol/L.對于一種新的PCR反應,可以用0.1-5 mmol/L的遞增濃度的Mg2+ 進行預備實驗,選出最適的Mg2+濃度。
 
  (3)在PCR反應混合物中, 應盡量減少有高濃度的帶負電荷的基團, 例如磷酸基團或EDTA等可能影響Mg2+ 離子濃度的物質(zhì),以保證最適Mg2+ 濃度。
 
  4. 模板
 
  (1)PCR反應必須以DNA為模板進行擴增, 模板DNA可以是單鏈分子,也可以是雙鏈分子,可以是線狀分子,也可以是環(huán)狀分子(線狀分子比環(huán)狀分子的擴增效果稍好)。
 
  (2)就模板DNA而言,影響PCR的主要因素是模板的數(shù)量和純度.一般反應中的模板數(shù)量為102 -105 個拷貝,對于單拷貝基因,這需要0.1μg的人基因組DNA,10ng的酵母DNA,1ng的大腸桿菌DNA.擴增多拷貝序列時,用量更少。
 
  (3)靈敏的PCR可從一個細胞,一根頭發(fā),一個孢子或一個精子提取的DNA中分析目的序列。
 
  (4)模板量過多則可能增加非特異性產(chǎn)物。DNA中的雜質(zhì)也會影響PCR的效率。
 
  5. Taq DNA聚合酶
 
  一般Taq DNA聚合酶活性半衰期為92.5℃ 130 min,95℃ 40 min, 97℃ 5 min?,F(xiàn)在人們又發(fā)現(xiàn)許多新的耐熱的DNA聚合酶,這些酶的活性在高溫下活性可維持更長時間。
 
  Taq DNA聚合酶的酶活性單位定義為74℃下,30 min,摻入10 nmol/L dNTP到核酸中所需的酶量。Taq DNA聚合酶的一個致命弱點是它的出錯率,一般PCR中出錯率為2×10-4 核苷酸/每輪循環(huán),在利用PCR克隆和進行序列分析時尤應注意.在100 μl PCR反應中,1.5-2單位的Taq DNA聚合酶就足以進行30輪循環(huán)。
 
  所用的酶量可根據(jù)DNA、引物及其它因素的變化進行適當?shù)脑鰷p.酶量過多會使產(chǎn)物非特異性增加,過少則使產(chǎn)量降低。
 
  反應結(jié)束后,如果需要利用這些產(chǎn)物進行下一步實驗,需要預先滅活Taq DNA聚合酶, 滅活Taq DNA聚合酶的方法有:
 
  (1)PCR產(chǎn)物經(jīng)酚: 抽提,乙醇沉淀。
 
  (2)加入10 mmol/L的EDTA螯合Mg2+ 。
 
  (3) 99-100℃加熱10 min。目前已有直接純化PCR產(chǎn)物的Kit可用。
 
  6. 反應緩沖液
 
  (1)反應緩沖液一般含10-50 mmol/L Tris·Cl (20℃下pH8.3-8.8), 50 mmol/L KCl和適當濃度的Mg2+ 。Tris·Cl在20℃時pH為8.3-8.8,但在實際PCR反應中,pH為6.8-7.8. 50 mmol/L的KCl有利于引物的退火。
 
  (2)反應液可加入5mmol/L的二硫蘇糖醇(DDT)或100 μg/ml的牛血清白蛋白(BSA),它們可穩(wěn)定酶活性,另外加入T4噬菌體的基因32蛋白則對擴增較長的DNA片段有利。
 
  (3)各種Taq DNA聚合酶商品都有自己特定的一些緩沖液。
 


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