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單分子FISH技術實現(xiàn)轉(zhuǎn)錄組研究的突破

閱讀:347發(fā)布時間:2013-11-8

分析基因表達,我們有很多選擇:qPCR、芯片和RNA-Seq。然而,大多數(shù)表達分析往往只關注一個參數(shù):轉(zhuǎn)錄本豐度。它們既不能提供空間信息,即特定RNA位于何處;也不能確定細胞之間表達水平的差異,因為細胞群體的研究讓這一信息丟失。

原位雜交(ISH)這種顯微鏡方法解決了這兩個問題。它利用標記的核酸探針來確定組織及細胞中DNA或RNA的空間位置和豐度。這種方法有兩種形式,熒光(FISH)和顯色(CISH)。之前,F(xiàn)ISH和CISH一直是定性的:要么陽性,要么陰性。隨著技術的發(fā)展,定量版本也被開發(fā)出來。

單分子熒光原位雜交(smFISH)是一種新的基因表達分析方法,能報告轉(zhuǎn)錄本豐度和空間定位。但到目前為止,smFISH還不能實現(xiàn)基因組范圍的分析。如今,瑞士蘇黎世大學的研究人員報告了一種策略,讓smFISH也插上高通量的翅膀。1

蘇黎世大學分子生命科學研究所的Lucas Pelkmans領導了這項研究。他解釋道,傳統(tǒng)的smFISH有兩個主要缺點,阻礙了它的高通量應用。首先,它產(chǎn)生相對較弱的信號,信噪比不太高。其次,它不能擴展,因為它需要高的放大倍數(shù),長的成像時間,并且每個轉(zhuǎn)錄本的條件需要優(yōu)化。

傳統(tǒng)的smFISH利用一系列短的寡核苷酸來檢測轉(zhuǎn)錄本,每個寡核苷酸上標記有一個熒光基團。這樣,mRNA上就有足夠濃度的熒光分子,產(chǎn)生可見的光點,但通常只有在60x或100x放大倍數(shù)下,使用油浸、大數(shù)值孔徑的透鏡才行。

Pelkmans及其團隊以支鏈DNA(branched DNA)為基礎開發(fā)了他們的方法。在這一策略中,15對寡核苷酸探針靶定一個特定的mRNA。這些探針將作為一級preamplifier探針的著陸墊,又為一些二級的amplifier探針提供了結(jié)合位點,zui后是一組三級的標記探針。

Pelkmans解釋道,這就像在轉(zhuǎn)錄本上種下了15顆雜交探針的樹。這種方法產(chǎn)生了放大的信號,亮度增加100倍,信噪比也提高3倍,而成像時間比傳統(tǒng)方法大大縮短。

憑借這種強烈的信號,研究小組將實驗過程自動化。他們建立了928個人類基因的支鏈DNA庫,并用培養(yǎng)的HeLa細胞進行了檢驗。在這一過程中,他們使用384孔板,每孔用一個探針,并使用相同的雜交和洗滌條件。雜交之后,他們以40x放大倍數(shù)對每孔中約1萬個細胞進行成像,并利用內(nèi)部開發(fā)的算法來提取轉(zhuǎn)錄本豐度和空間特征,例如,斑點靠近細胞膜,還是細胞核,集中還是分散。他們總共收集了18個空間變量,并利用計算機集群來評估它們與基因調(diào)控的關系。

數(shù)據(jù)表明,那些表現(xiàn)出相似的空間特征和相似的細胞間差異的基因,也更有可能具有相似的功能作用。

“事實證明,那些空間特征實際上提供了更多信息,可預測基因之間的功能性相互作用,”Pelkmans解釋道。

大家都認為,單細胞水平的轉(zhuǎn)錄充滿噪音。也就是說,細胞質(zhì)中兩個遺傳上*相同的細胞可能有著*不同的轉(zhuǎn)錄本數(shù)量。然而,蛋白水平不一定反映這種轉(zhuǎn)錄本豐度。Pelkmans認為,生物過程的可靠性有可能源于mRNA亞細胞定位的調(diào)節(jié),而他們的數(shù)據(jù)也支持這一觀點。如今,他們的目標是直接檢驗這一假說,以確定“轉(zhuǎn)錄本的空間結(jié)構是否緩沖了轉(zhuǎn)錄噪音”。

霍華德•休斯醫(yī)學研究所的項目科學家Timothee Lionnet認為這項研究是“自動化的力作”。他談道:“他們將FISH技術帶到了多重PCR或RNA-Seq技術所達到的通量。”

據(jù)Lionnet介紹,這項技術的一個明顯延伸是多重檢測每個細胞中的多個轉(zhuǎn)錄本。兩家推出支鏈DNA技術的公司,Affymetrix和Advanced Cell Diagnostics,目前已經(jīng)提供多重的FISH探針。據(jù)Life Technologies介紹,它將在11月開始銷售ACD的smFISH試劑。

之前,加州理工學院的化學家蔡龍(Long Cai)也介紹了一種超分辨率條形碼技術,能檢測每個細胞中32個不同轉(zhuǎn)錄本2。他們利用smFISH技術將單個mRNA與包含*熒光基團組合的寡核苷酸探針進行了雜交,隨后利用超分辨率顯微鏡計數(shù)了這些熒光條形碼mRNA。

Pelkmans的團隊觀察到總體上與RNA-Seq的數(shù)據(jù)有著良好的一致性,但每個細胞的轉(zhuǎn)錄本數(shù)量沒那么高。他們稱之為“天花板效應”。此外,這種技術還不能有效檢測核轉(zhuǎn)錄本,不過研究人員在固定液中加入乙酸,能減輕這種影響。


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