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技術(shù)文章

活化微珠的交連

閱讀:1067發(fā)布時(shí)間:2010-9-14

抗體與固相基質(zhì)共價(jià)結(jié)合的另一種常用方法是利用多種化學(xué)試劑使微珠活化,然后將純化的抗體與活化的微珠結(jié)合。這種方法有許多優(yōu)點(diǎn),通??梢栽诔降鞍踪|(zhì)能夠耐受的苛刻條件下使微珠活化,因此可以采用很多激活方法。此外,許多結(jié)合方法形成的交連,在范圍廣泛的變性條件下仍保持穩(wěn)定。另一個(gè)優(yōu)點(diǎn)是許多活性微珠有商品出售??偟恼f來,商品化的微珠為免疫親和純化提供了較好的活化微珠。
1.準(zhǔn)備工作
應(yīng)用抗體柱對(duì)各種蛋白質(zhì)進(jìn)行親和純化的主要特點(diǎn)是在足夠溫和的條件下就能將抗原從層析柱上洗脫,并能保持蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)和/或功能不改變。洗脫的難易是由連接抗原與抗體之間結(jié)合鍵的類型和數(shù)量決定的。在制備大規(guī)模層析柱用于純化之前,有必要對(duì)所有可利用的抗體進(jìn)行測(cè)試,從中選擇適當(dāng)?shù)目贵w制備親和層析柱。
所制備的抗體緩沖液中不應(yīng)含有無(wú)關(guān)的化合物,因其可通過反應(yīng)基團(tuán)結(jié)合到活性微珠上,這種結(jié)合反應(yīng)很可能就發(fā)生在抗體的氨基(或巰基)上。如果這些化合物是在抗體純化時(shí)使用,所制備的抗體必須對(duì)0.5mol/LPBS(pH7,5)結(jié)合緩沖液充分透析。
2.所需溶液、試劑和特殊設(shè)備
純化的抗體; 0.5mmol/L磷酸鈉(pH7.5); 含1mol/LNaCi的0.05mol/L磷酸鈉溶液(pH7.5); 100mmol/L乙醇胺(pH7.5) 搖床。
3.操作步驟
(1)用0.5mol/L(pH7.5)的磷酸鈉溶液將抗體配成所需濃度。留少量樣品供測(cè)定結(jié)合效率用。每次實(shí)驗(yàn)用于結(jié)合的抗體的量都不相同。在大多數(shù)實(shí)驗(yàn)中每毫升微珠內(nèi)加10mg抗體可得到較高容量層析柱。
(2)加入按產(chǎn)品使用說明制備的活化的微珠
(3)置搖床上輕輕混合放室溫過夜。
(4)用0.5mol/L磷酸鈉(pH7.5)洗滌微珠2次。留取結(jié)合過夜的上清, 比較結(jié)合前、后樣本中的蛋白含量。
(5)用含1mol/LNaCl的0.05mol/L磷酸鈉溶液(PBS,pH7.5)洗滌微珠1次。
(6)加10倍體積的100retool/L乙醇胺(pH7.5)室溫下孵育4h或過夜,振蕩。
(7)用PBS洗滌2次,加入0.01%硫柳汞,免疫微珠可置4C貯存,數(shù)月內(nèi)保持穩(wěn)定。
制備好的微珠即呵用于抗原的免疫親和純化
常見問題
將抗體有效地結(jié)合到活性微珠上雖是——項(xiàng)簡(jiǎn)單的工作,但保持抗體的活性常很困難??贵w失活大多是由于抗體與微珠過度偶聯(lián),或偶聯(lián)發(fā)生在抗體的抗原識(shí)別區(qū)。這兩種結(jié)果都會(huì)使抗體—微珠基質(zhì)結(jié)合抗原的能力顯著低于未偶聯(lián)的同量抗體。保持10%-50%的結(jié)合活性較為常見,并可認(rèn)為是活性良好水平。在偶聯(lián)過程中,如果抗體的活性遠(yuǎn)遠(yuǎn)低于這一水平,可采取下列三種措施保持抗體活性。
*種控制失活的重要方法是在廣泛偶聯(lián)之前終止反應(yīng),偶聯(lián)率可以在開始實(shí)驗(yàn)前測(cè)定。當(dāng)不到50%的抗體結(jié)合時(shí)即停止反應(yīng),未結(jié)合的抗體不會(huì)受到損害,可以在其他實(shí)驗(yàn)中再使用,及早終止反應(yīng)可以控制每種抗體通過許多不同位點(diǎn)偶聯(lián)。終止結(jié)合反應(yīng)的恰當(dāng)時(shí)間可通過一個(gè)小規(guī)模的不同作用時(shí)間來確定。未偶聯(lián)的抗體可通過SDS隅聚丙烯酰胺凝膠電泳,和考馬斯亮藍(lán)染色來測(cè)定重鏈和輕鏈條帶。
第二種防止過度偶聯(lián)的方法是調(diào)整反應(yīng)的pH值以減慢偶聯(lián)速度。大多數(shù)偶聯(lián)方法是通過抗體上的氨基連接,而氨基基團(tuán)的反應(yīng)對(duì)pH值較敏感。如果抗體偶聯(lián)的pH值低于氨基基團(tuán)的pK值,大多數(shù)氨基基團(tuán)在任何時(shí)候都不會(huì)發(fā)生偶聯(lián),這樣就控制了過度偶聯(lián)率。下述方法采用中性的pH值,有助于這一問題的解決。如果仍然出現(xiàn)過度偶聯(lián),可以試用略低的pH值。選用合適的pH值需憑經(jīng)驗(yàn)通過多次試驗(yàn)才能確定,不同的抗體所需的條件也不一樣??梢圆捎弥饾u降低pH值單位(如0.5)的方式來測(cè)試新的實(shí)驗(yàn)條件。另一方面,如果出現(xiàn)太低的偶聯(lián)率,可以增加緩沖液的pH值,延長(zhǎng)偶聯(lián)時(shí)間。pH值在8.2以上時(shí),可用0.5mol/L碳酸鹽緩沖液代替磷酸鹽緩沖液。
第三種減少過度偶聯(lián)問題的方法是將其他氨基基團(tuán)引入抗體偶聯(lián)反應(yīng)。在預(yù)備試驗(yàn)時(shí),用不同濃度的帶有一級(jí)氨基基團(tuán)的小分子物質(zhì)阻斷抗體結(jié)合到微珠上。2種zui常用的化合物是乙醇胺和*。從中選一個(gè)適當(dāng)濃度的封閉劑使偶聯(lián)過程中只有約10%的抗體結(jié)合。選擇一個(gè)合理的起始濃度,建議抗體的zui終濃度不超過10mg/m1濕微珠。
zui后,所用的抗體可能有一個(gè)氨基基團(tuán)是分布在抗原結(jié)合位點(diǎn)內(nèi)。這個(gè)位點(diǎn)與大多數(shù)活性微珠結(jié)合后特別容易失活。如果在偶聯(lián)反應(yīng)中,抗原結(jié)合能力不斷喪失,可改用蛋白A或蛋白G微珠,以及使用不依賴于氨基基團(tuán)的雙功能交聯(lián)劑進(jìn)行偶聯(lián)。
 


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