SDS-PAGE “hall of shame”

如果你能夠非常熟練的制備一塊的凝膠，甚至對它進行改進都十分困難，那么你真的應該值得慶幸！但是如果你不能達到這個水平也不要灰心。所有的的科學家都是從失敗中成長起來的，事實上，如果不出錯我們就很難學到更多的東西！（我的western blot技術也是從上百次的失敗中成熟起來的，這中間我就學到了很多，相對于PCR，我*次就成功的做出了RT-PCR和重疊延伸PCR，但是對于PCR我能說的真的很少?。┻@本“失誤大全”包括了過去實驗室中許多學生包括老師跑的zui“爛”的膠，它們代表了人們在跑膠是zui容易犯的多種錯誤（當然這些錯誤仍在更新之中）?？茨阕约旱哪z缺陷也許并不能很好的解決問題，至少不是zui的解決方式，本文用圖例指出你可能在哪一些方面改進你的技術。

評價你的膠找出你的癥狀并和這個小冊子收集的實例比對。每一個例子都配有完整的凝膠圖像和與之相對的解釋及建議。從這本“失誤大全”中你應該能夠找到解決你的問題的正確的方法。

*部分：涂抹痕跡（smears）

涂抹痕跡可能由于多種原因引起，但是zui常見的原因是聚丙烯酰胺凝膠倒膠的不均勻或者上樣量過大。這塊膠倒膠不正確，在上部膠倒入制膠槽之前就已經(jīng)發(fā)生聚合。首先倒入的膠聚合發(fā)生的太快了。與其重新倒膠，不如停止倒膠重新準備新的聚丙烯酰胺混合液，然后將新的膠倒入舊膠的上方。但是顯然這種連接不是非常牢固。（我推薦重新倒膠，制膠很關鍵，如果你后續(xù)還要做blot，膠沒有跑好浪費太多了?。┎榭慈?/span>


第二部分：條帶過淺

這個問題可能是由于加樣孔成形不佳和/或凝膠加樣不認真所致。背景較深而且不均一說明蛋白可能存在于電泳緩沖液中。zui有可能原因是由于裝置沒有正確緊密的裝配導致較多的樣品溢出加樣孔。溢出的樣品很可能不會重新溶入形成條帶，因為這些蛋白從上層緩沖液的間隔持續(xù)進入凝膠。查看全文

第三部分：前端指示劑缺失

為了裝置凝膠花了不少功夫，如果停止電泳太晚就太可惜了。因為如果部分前端的指示劑已經(jīng)跑出凝膠的話就不能確定各個條帶相對應的遷移率了。這塊膠有一個內(nèi)部的刻度——也就是跑膠時帶上了分子量標準（Marker）。由于條帶較平直，任意條帶都可以作為參考來確定跑膠的遷移率。查看全文  

第四部分：過早終止電泳

很明顯這塊膠的指示劑前端位于什么位置。仍有繼續(xù)電泳的空間可以把條帶分得更開以增加分辨率。相對遷移率是為了分析凝膠相同位置上相同大小的蛋白。隨著蛋白遷移距離的增加分辨率逐漸增高直到彌散限制了分辨率的繼續(xù)提高。查看全文

第五部分：混在因素

這個問題的凝膠在整個“失誤大全”中到處可見。這是由于分離膠的表面不平所造成的，因此當樣品濃縮之后所有的條帶都變扭曲的形狀。扭曲的條帶也可以見于電場的不均一，但是這種條帶的扭曲應該是對稱的。